激光共聚焦顯微鏡是一種高分辨率的顯微鏡技術，廣泛應用于生物學、材料科學等領域，能夠觀察樣品的熒光標記、三維結構等。以下是對激光共聚焦顯微鏡樣品的要求及制樣方法的詳細介紹：

一、樣品要求

生物樣品

熒光表達：生物樣品應先在熒光顯微鏡下觀察熒光表達是否正常，以確定是否有必要使用激光共聚焦顯微鏡。

蓋玻片厚度：要求≤0.17mm。

激發與發射波長：需明確激發波長和發射波長。

掃描參數：若需重構，需明確掃描區域大小、位置、Z步進，這些參數會影響測試時間。

標本狀態：樣品必須貼壁良好，不能懸浮，并需要在載玻片上固定好后送樣測試。

顯微成像：樣品需要加抗熒光淬滅劑，蓋玻片需要固定。

材料樣品

測試范圍：樣品拍出來*大面積為1.11×1.8mm到5×5mm范圍內，顏色可調。

尺寸要求：樣品的尺寸沒有嚴格要求，但必須平整。

其他樣品

對于固體類直接拍攝樣品，建議長寬不超過20mm，厚度不超過10mm，重量不超過10g，并標出測試面。

微米材料直接拍攝類建議進行云視頻溝通，且微粒尺寸不低于5微米。

二、制樣方法

組織切片樣品

組織采集：根據實驗條件和目的采集組織，可采用液氮冷凍法或多聚甲醛（PFA）固定法。

冷凍包埋：使用氣體CO2冷凍包埋法、干冰冷凍包埋法、液氮冷凍法或直接冷凍法進行組織冷凍，然后用冷凍切片機切成5~15μm的切片。

免疫熒光標記：將切片進行免疫熒光抗體標記，標記成功后用熒光顯微鏡觀察，確認后再移至激光共聚焦顯微鏡掃描成像。

細胞培養樣品

熒光表達載體的構建與導入：通過PCR擴增目的蛋白的cDNA，接入到熒光蛋白表達載體的多克隆位點，然后導入到培養細胞中。

細胞培養與轉染：按照標準的培養方法進行細胞培養，并在適當時間進行轉染。

免疫熒光染色：使用預冷的PBS緩沖溶液洗滌細胞，去除殘留的培養液，然后進行固定、通透、封閉、抗體結合、洗滌和封片等步驟。

其他樣品

菌液/污泥/污水類樣品：進行離心處理后，根據需要進行染色和保存。

生物膜樣品：要求樣品表面平整，并標出拍攝面，可根據需要在爬片上培養生物膜。

植物類樣品：可進行簡單冰切及刀切，或進行病理組織切片測試項目。

與細胞共培養的樣品：根據樣品類型和與細胞的作用方式，進行適當的處理和制樣。

三、注意事項

樣品在制備和保存過程中應避免污染和損壞。

不同類型的樣品可能需要使用不同的熒光染料和標記方法。

在進行激光共聚焦顯微鏡觀察前，應確保樣品已經過適當的處理和固定。

激光共聚焦顯微鏡的使用需要專業知識和技能，應由專業人員進行操作和維護。

綜上所述，激光共聚焦顯微鏡對樣品的要求和制樣方法因樣品類型而異。為確保觀察結果的準確性和可靠性，必須嚴格按照規定的步驟和要求進行制樣操作。